Envía por correo este artículo 
Staphylococcus aureus: factores asociados a su hipervirulencia y adhesión y formación de biopelículas
Resumen
Staphylococcus aureus es una bacteria Gram positiva los cuales poseen diversos factores asociados a su hipervirulencia, adhesión, y dentro de estos parámetros la formación de biopelículas que le otorgan mecanismos de resistencia antimicrobiana y evasión de las respuestas inmunes, por lo que el objetivo de este trabajo fue el de evaluar información documentada sobre Staphylococcus aureus: factores asociados a su hipervirulencia y adhesión y formación de biopelículas, por lo cual se expone una revisión bibliográfica referente a estos factores mencionados; la metodología fue una investigación cualitativa, exploratoria, donde se realiza una revisión bibliográfica exhaustiva de artículos científicos en base de datos de los buscadores Google Académco, Pubmed, Scielo, Elsevier, utilizando las palabras claves: Staphylococcus aureus, hipervirulencia, adhesión, biopelículas en idiomas inglés y español; los artículos utilizados en la presente revisión abarcaran 5 años, 2015 – 2020; se presentan los resultados de los contenidos de los artículos y referentes a las variables de estudio; en los resultados se tiene que los factores son diversos entre los que están los genes codificantes como la leucocidina de Panton-Valentine, de adhesión de matriz MSCRAMMs el sistema de detección de quórum Agr, la adherencia de enzimas y toxinas y la formación de biopelículas, además que existe un amplio espectro de enfermedades que varían desde infecciones leves de piel y tejidos blandos hasta infecciones graves como las relacionadas a dispositivos biomédicos, con una morbimortalidad significativa, y la formación de biopelículas es considerado un factor de virulencia que le otorga características de resistencia a la bacteria que incide también en su alta prevalencia.
Palabras clave
Referencias
Gutierrez Jauregui R, Fleige H, Bubke A, Rohde M, Weiss S, Förster R. IL-1β Promotes Staphylococcus aureus Biofilms on Implants in vivo. Front Immunol. 2019;10(May):1082. DOI: 10.3389/fimmu.2019.01082
Torres NS, Abercrombie JJ, Srinivasan A, Lopez-Ribot JL, Ramasubramanian AK, Leung KP. Screening a Commercial Library of Pharmacologically Active Small Molecules against Staphylococcus aureus Biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 2016;60(10):5663–72. DOI: 10.1128/aac.00377-16
Méndez Y, Barrera M. Fisiopatología de la sepsis por gram positivos. Rev Cuarzo. 2016;21(1):51–65.
Scherr TD, Hanke ML, Huang O, James DBA, Horswill AR, Bayles KW, et al. Staphylococcus aureus biofilms induce macrophage dysfunction through leukocidin AB and alpha-toxin. MBio. 2015;6(4):25–7. DOI: 10.1128/mbio.01021-15
Schilcher K, Andreoni F, Dengler Haunreiter V, Seidl K, Hasse B, Zinkernagel AS. Modulation of Staphylococcus aureus Biofilm Matrix by Subinhibitory Concentrations of Clindamycin. Antimicrob Agents Chemother. 2016;60(10):5957–67. DOI: 10.1128/aac.00463-16
Nair S, Desai S, Poonacha N, Vipra A, Sharma U. Antibiofilm activity and synergistic inhibition of S. aureus biofilms by bactericidal protein P128 in combination with antibiotics. Antimicrob Agents Chemother. 2016;60(12):AAC.01118-16. DOI: 10.1128/aac.01118-16
Kong E, Tsui C, Kucharíková S, Andes D, Van Dijck P, Jabra-Rizk MA. Commensal Protection of Staphylococcus aureus against Antimicrobials by Candida albicans Biofilm Matrix. Am Soc Microbiol. 2016;7(5):1–12. DOI: 10.1128/mbio.01365-16.editor
Abente S, Carpinelli L, Guillén R, Rodríguez F, Fariña N, Laspina F, et al. Frecuencia de Staphylococcus aureus meticilino resistente y del factor de virulencia PVL en pacientes ambulatorios con infección de piel y partes blandas de Asunción, Paraguay. Mem Inst Investig Cienc Salud. 2016;14(2). DOI: 10.18004/mem.iics/1812-9528/2016.014(02)
Guillén R, Carpinelli L, Rodríguez F, Castro H, Quiñónez B, Campuzano A, et al. Staphylococcus aureus adquiridos en la comunidad: caracterización clínica, fenotípica y genotípica de aislados en niños paraguayos. Rev Chil Infectol 2016. 2016;33(6):609–18.
Rodríguez F, Carpinelli L, Basualdo W, Castro H, Quiñonez B, Arguello R, et al. Frecuencia de genes que codifican factores de virulencia en Staphylococcus aureus aislados de niños que concurrieron al Hospital General Pediátrico Niños de Acosta Ñú, durante el año 2010. Mem Inst Investig Cienc Salud. 2015;13(1):58. DOI: 10.18004/mem.iics/1812-9528/2015.013(01)58-066
Carniello V, Peterson BW, van der Mei HC, Busscher HJ. Role of adhesion forces in mechanosensitive channel gating in Staphylococcus aureus adhering to surfaces. npj Biofilms Microbiomes. 2020;6(1):31. DOI: 10.1038/s41522-020-00141-z
Lauková A, Pogány Simonová M, Focková V, Kološta M, Tomáška M, Dvorožňáková E. Susceptibility to Bacteriocins in Biofilm-Forming, Variable Staphylococci Isolated from Local Slovak Ewes’ Milk Lump Cheeses. Foods. 2020;9(9):1335. DOI: 10.3390/foods9091335
Orazi G, Ruoff KL, O’Toole GA. Pseudomonas aeruginosa Increases the Sensitivity of Biofilm- Grown Staphylococcus aureus to Membrane-Targeting Antiseptics and Antibiotics. MBio. 2019;10(4):1–15.
Caldas Arias L. Bacterias-Biofilms y resistencia antimicrobiana. Rev Fac Ciencias la Salud, Univ del Cauca. 2015;17(1):20–7.
Dotto C. Adaptabilidad de Staphylococcus aureus frente a señales microambientales. Impacto sobre la formacion de biopelicula. Universidad de Buenos Aires. 2017.
Trujillo García M. Biofilms microbianos. Encycl Microbiol. 2017;110–44.
Farinati AE. Biopelículas: Un desafío para entender la patogénesis y la terapia antiinfectiva. Apunt Lab N° VI Britania. 2016;1–15.
Cruzado-Bravo MLM, Silva NCC, Rodrigues MX, Saldaña E, Contreras-Castillo CJ, Sturion GL. Biopelículas de Staphylococcus spp. sobre acero inoxidable utilizando leche y brain heart infusion broth como medios de cultivo. Sci Agropecu. 2018;9(4):485–91. DOI: 10.17268/sci.agropecu.2018.04.03
Kwiecinski J, Peetermans M, Liesenborghs L, Na M, Björnsdottir H, Zhu X, et al. Staphylokinase Control of Staphylococcus aureus Biofilm Formation and Detachment Through Host Plasminogen Activation. J Infect Dis. 2016;213(1):139–48. DOI: 10.1093/infdis/jiv360
Pinilla G, Bautista A, Cruz C, Chavarro B, Navarrete J, Muñoz L, et al. Determinación de factores de adhesión asociados a la formación de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcus aureus y Staphylococcus epidermidis. Nova. 2017;15(27):67. DOI: 10.22490/24629448.1959
Dastgheyb SS, Villaruz AE, Le KY, Tan VY, Duong AC, Chatterjee SS, et al. Role of Phenol-Soluble Modulins in Formation of Staphylococcus aureus Biofilms in Synovial Fluid. Camilli A, editor. Infect Immun. 2015;83(7):2966–75. DOI: 10.1128/iai.00394-15
Kumaran D, Taha M, Yi Q, Ramirez-Arcos S, Diallo J-S, Carli A, et al. Does Treatment Order Matter? Investigating the Ability of Bacteriophage to Augment Antibiotic Activity against Staphylococcus aureus Biofilms. Front Microbiol. 2018;9(FEB):1–11. DOI: 10.3389/fmicb.2018.00127
Ortegon I. Presencia de Staphylococcus aureus en alimentos y manipuladores de restaurantes escolares del sur del Departamento del Tolima. Univ Tolima [Internet]. 2017;87. Available from: https://bit.ly/3fAJh2
Acuña M, Benadof D, Jadue C, Hormazábal JC, Alarcón P, Contreras J, et al. Staphylococcus aureus resistente a meticilina asociado a la comunidad (SARM-AC): comunicación de los primeros cuatro casos pediátricos descritos en Hospital de Niños Roberto del Río. Rev Chil Infectol. 2015;32(3):350–6.
Rodríguez Acosta F, Basualdo Acuña WD, Castro H, Campuzano A, Macchi ML, Ortellado de Canese J, et al. MLVA analysis and virulence profile of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus causing infections in Paraguayan children. Rev Argent Microbiol. 2018;50(2):151–6. DOI: 10.1016/j.ram.2017.03.012
Molina J. Virulencia del Staphylococcus aureus en la población aledaña a centros de salud . Universidad Peruana Unión. Lima; 2020.
Pinilla G, Bautista A, Cruz C, Chavarro B, Navarrete J, Muñoz L, et al. Determinación de factores de adhesión asociados a la formación de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcus aureus y Staphylococcus epidermidis. Nova. 2017;15(27):67. DOI: 10.22490/24629448.1959
Pasachova Garzón J, Ramirez Martinez S, Muñoz Molina L. Staphylococcus aureus: generalidades, mecanismos de patogenicidad y colonización celular. Nova. 2019;17(32):25–38. DOI: 10.22490/24629448.3631
Pereyra EAL, Picech F, Renna MS, Baravalle C, Andreotti CS, Russi R, et al. Detection of Staphylococcus aureus adhesion and biofilm-producing genes and their expression during internalization in bovine mammary epithelial cells. Vet Microbiol. 2016;183:69–77. DOI: 10.1016/j.vetmic.2015.12.002
Cho H, Jeong D-W, Liu Q, Yeo W-S, Vogl T, Skaar EP, et al. Calprotectin Increases the Activity of the SaeRS Two Component System and Murine Mortality during Staphylococcus aureus Infections. DeLeo FR, editor. PLOS Pathog. 2015;11(7):e1005026. DOI: 10.1371/journal.ppat.1005026
Galli L, Brusa V, Pellicer K. Staphylococcus aureus. Inter-Médica. 2019.
Arsanios DM, Bastidas Goyes RA, Chaar Hernández A, Herazo Cubillos A, Beltrán Caro LM, Vesga Martín D. Neumonía adquirida en la comunidad por Staphylococcus aureus resistente a meticilina. Univ Médica. 2017;58(3):e1–2. DOI: 10.11144/javeriana.umed58-3.stap
Geoghegan JA, Dufrêne YF. Mechanomicrobiology: How Mechanical Forces Activate Staphylococcus aureus Adhesion. Trends Microbiol. 2018;26(8):645–8. DOI: 10.1016/j.tim.2018.05.004
Rudra P, Boyd JM. Metabolic control of virulence factor production in Staphylococcus aureus. Curr Opin Microbiol. 2020;55:81–7. DOI: 10.1016/j.mib.2020.03.004
Foster TJ, Geoghegan JA. Staphylococcus aureus. In: Molecular Medical Microbiology. Elsevier; 2015. p. 655–74. DOI: 10.1016/b978-0-12-397169-2.00037-8
Khan BA, Yeh AJ, Cheung GY, Otto M. Investigational therapies targeting quorum-sensing for the treatment of Staphylococcus aureus infections. Expert Opin Investig Drugs. 2015;24(5):689–704. DOI: 10.1517/13543784.2015.1019062
Baenas R, Sánchez M, González L, Álvarez M. Prevalencia y susceptibilidad antimicrobiana de Staphylococcus aureus en muestras de liquido articular y tejido oseo de pacientes pediatricos del Hospital Infantil Municipal de Cordoba. Bioquinforma Digit. 2016;23(4):1–6.
Pascual DB. Líneas genéticas, virulencia y resistencia a antibióticos en Staphylococcus aureus de diferentes orígenes. Análisis de marcadores de adaptación al huésped y comportamiento en Caenorhabditis elegans. Universidad de La Rioja. 2015.
Sanjuan N. Estafilococos y Estreptococos. Universidad de Buenos Aires. 2019.
Basualdo W. Staphylococcus Estafilococo. Universidad Nacional de Asunción. Asunción, Paraguay; 2017.
Cercenado E. Epidemiología de la infección por grampositivos resistentes. Rev Española Quimioter. 2016;9(1):6–9.
Izquierdo B, Mecol V, Narbaiz V. Atributos de adherencia, formación de biofilm y susceptibilidad antibiótica de Staphylococcus aureus asociados a mastitis subclínica. Universidad de la República. 2015.
Tan X, Coureuil M, Charbit A, Jamet A. Multitasking Actors of Staphylococcus aureus Metabolism and Virulence. Trends Microbiol. 2020;28(1):6–9. DOI: 10.1016/j.tim.2019.10.013
Lu H, Zhao L, Si Y, Jian Y, Wang Y, Li T, et al. The Surge of Hypervirulent ST398 MRSA Lineage With Higher Biofilm-Forming Ability Is a Critical Threat to Clinics. Front Microbiol. 2020;12(March):1–10. DOI: 10.3389/fmicb.2021.636788
Strauß L, Stegger M, Akpaka PE, Alabi A, Breurec S, Coombs G, et al. Origin, evolution, and global transmission of community-acquired Staphylococcus aureus ST8. Proc Natl Acad Sci. 2017;114(49):E10596–604. DOI: 10.1073/pnas.1702472114
McClure J-A, Zhang K. Complete Genome Sequence of a Community-Associated Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Hypervirulent Strain, USA300-C2406, Isolated from a Patient with a Lethal Case of Necrotizing Pneumonia. Genome Announc. 2017;5(22):17–9. DOI: 10.1128/genomea.00461-17
Gimza BD, Jackson JK, Frey AM, Budny BG, Chaput D, Rizzo DN, et al. Unraveling the Impact of Secreted Proteases on Hypervirulence in Staphylococcus aureus. Torres VJ, editor. MBio. 2020;12(1):1–15. DOI: 10.1128/mbio.03288-20
Herman-Bausier P, Labate C, Towell AM, Derclaye S, Geoghegan JA, Dufrêne YF. Staphylococcus aureus clumping factor A is a force-sensitive molecular switch that activates bacterial adhesion. Proc Natl Acad Sci. 2018;115(21):5564–9. DOI: 10.1073/pnas.1718104115
Comos M, Penadés J, Viana D. Mecanismos de adaptación al hospedador de Staphylococcus aureus: Una aproximación desde la secuenciación de genomas. Universidad CEU Cardenal Herrera. 2015.
Cisterna R, Madriaga L. Patogenia de la infección por Staphylococcus aureus. Dep Microbiol e Inmunol Fac Med Univ del País Vasco/EHU Bilbao. 2015;11(1):11–7.
Kobayashi SD, Malachowa N, DeLeo FR. Pathogenesis of Staphylococcus aureus Abscesses. Am J Pathol. 2015;185(6):1518–27. DOI: 10.1016/j.ajpath.2014.11.030
Bhattacharya M, Berends ETM, Chan R, Schwab E, Roy S, Sen CK, et al. Staphylococcus aureus biofilms release leukocidins to elicit extracellular trap formation and evade neutrophil-mediated killing. Proc Natl Acad Sci. 2018;115(28):7416–21. DOI: 10.1073/pnas.1721949115
Karli A, Yanik K, Paksu MS, Sensoy G, Aykanat A, Yener N, et al. Infección diseminada por Staphylococcus aureus positivo para leucocidina de Panton-Valentine en un niño. Arch Argent Pediatr. 2016;114(2):e75–7. DOI: 10.5546/aap.2016.e75
Sause WE, Buckley PT, Strohl WR, Lynch AS, Torres VJ. Antibody-Based Biologics and Their Promise to Combat Staphylococcus aureus Infections. Trends Pharmacol Sci. 2015;37(3):231–41. DOI: 10.1016/j.tips.2015.11.008
McGuinness W, Malachowa N, DeLeo F. Vancomycin resistance in Staphylococcus aureus. Yale J Biol Med. 2017;90:269–81.
Sejas A, Zurita B, Rodríguez M, Espinoza J, Sejas M. Prevalencia de Staphylococcus Aureus en portadores nasales del personal de enfermería Hospital Viedma. Rev Científica Cienc Médica ISSN. 2016;19(1):29–33.
Thomer L, Schneewind O, Missiakas D. Pathogenesis of Staphylococcus aureus Bloodstream Infections. Annu Rev Pathol Mech Dis. 2016;11(1):343–64. DOI: 10.1146/annurev-pathol-012615-044351
David M, Daum R. Treatment of Staphylococcus aureus Infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2017; DOI: 10.1007 / 82_2017_42
Serra R, Grande R, Butrico L, Rossi A, Settimio UF, Caroleo B, et al. Chronic wound infections: the role of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus. Expert Rev Anti Infect Ther. 2015;13(5):605–13. DOI: 10.1586/14787210.2015.1023291
Oliveira D, Borges A, Simões M. Staphylococcus aureus Toxins and Their Molecular Activity in Infectious Diseases. Toxins (Basel). 2018;10(6):252. DOI: 10.3390/toxins10060252
Cruz S, Tapia G, Castañon A. Distribución de genes de adhesión y regulación de biofilm en Staphylococcus aureus | Enhanced Reader. Acta Bioquímica Clínica Latinoam. 2016;50(4):713–20.
Ibarguren Quesada S, Juliarena M, Monteavaro C. Identificación de Staphylococcus spp. y evaluación de la producción de biofilm. Universidad Nacional del Centro de la Provincia de Buenos Aires. 2019.
García A, Martínez C, Juárez RI, Téllez R, Paredes MA, Herrera M del R, et al. Resistencia a la meticilina y producción de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcus aureus y Staphylococcus coagulasa negativa en México. Biomédica. 2019;39(3):513–23. DOI: 10.7705/biomedica.4131
Almatroudi A, Gosbell IB, Hu H, Jensen SO, Espedido BA, Tahir S, et al. Staphylococcus aureus dry-surface biofilms are not killed by sodium hypochlorite: implications for infection control. J Hosp Infect. 2016;93(3):263–70. DOI: 10.1016/j.jhin.2016.03.020
Mottola C, Matias CS, Mendes JJ, Melo-Cristino J, Tavares L, Cavaco-Silva P, et al. Susceptibility patterns of Staphylococcus aureus biofilms in diabetic foot infections. BMC Microbiol. 2016;16(1):119. DOI: 10.1186/s12866-016-0737-0
Andrés Y. Biopelículas bacterianas de tubo-orotraqueal y su sensibilidad antimicrobiana en dos UCIS en Bogotá, Colombia. Universidad del Rosario. 2020.
Kwiecinski JM, Crosby HA, Valotteau C, Hippensteel JA, Nayak MK, Chauhan AK, et al. Staphylococcus aureus adhesion in endovascular infections is controlled by the ArlRS–MgrA signaling cascade. Otto M, editor. PLOS Pathog. 2019;15(5):e1007800. DOI: 10.1371/journal.ppat.1007800
Miao J, Lin S, Soteyome T, Peters BM, Li Y, Chen H, et al. Biofilm Formation of Staphylococcus aureus under Food Heat Processing Conditions: First Report on CML Production within Biofilm. Sci Rep. 2019;9(1):1312. DOI: 10.1038/s41598-018-35558-2
Dong G, Liu H, Yu X, Zhang X, Lu H, Zhou T, et al. Antimicrobial and anti-biofilm activity of tannic acid against Staphylococcus aureus. Nat Prod Res. 2018;32(18):2225–8. DOI: 10.1080/14786419.2017.1366485
Bhattacharya M, Wozniak DJ, Stoodley P, Hall-Stoodley L. Prevention and treatment of Staphylococcus aureus biofilms. Expert Rev Anti Infect Ther. 2015;13(12):1499–516. DOI: 10.1586/14787210.2015.1100533
Araújo A. Formación de biofilms por bacterias. Universidad de Sevilla. 2016.
Neopane P, Nepal HP, Shrestha R, Uehara O, Abiko Y. In vitro biofilm formation by Staphylococcus aureus isolated from wounds of hospital-admitted patients and their association with antimicrobial resistance. Int J Gen Med. 2018;Volume 11:25–32. DOI: 10.2147/ijgm.s153268
Macià MD, del Pozo JL, Díez-Aguilar M, Guinea J. Diagnóstico microbiológico de las infecciones relacionadas con la formación de biopelículas. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2018;36(6):375–81. DOI: 10.1016/j.eimc.2017.04.006
Yousefi M, Pourmand MR, Fallah F, Hashemi A, Mashhadi R, Nazari-Alam A. Characterization of Staphylococcus aureus biofilm formation in urinary tract infection. Iran J Public Health. 2016;45(4):485–93.
Cervantes-García E, García-González R, María Salazar-Schettino P. Características generales del Staphylococcus aureus. Vol. 61, Rev Latinoam Patol Clin Med Lab. 2015.
Lasa I, del Pozo J, Penadés J, Leiva J. Biofilms bacterianos e infección. An Sist Sanit Navar. 2015;28(2).
Cortés J, Gutiérrez C, Pineda F, Díaz D, Durán M, Daniel J. Prevalencia de Staphylococcus aureus en los pacientes con rinosinusitis crónica polipoidea. An Med (Barc). 2019;64:277–80. DOI: 10.35366/bc194h
Ramakrishnan Y, Shields RC, Elbadawey MR, Wilson JA. Biofilms in chronic rhinosinusitis: what is new and where next? J Laryngol Otol. 2015;129(8):744–51. DOI: 10.1017/s0022215115001620
Fastenberg JH, Hsueh WD, Mustafa A, Akbar NA, Abuzeid WM. Biofilms in chronic rhinosinusitis: Pathophysiology and therapeutic strategies. World J Otorhinolaryngol - Head Neck Surg. 2016;2(4):219–29. DOI: 10.1016/j.wjorl.2016.03.002
Espinosa E. Actividad anti-biofilm de los extractos de plantas urtica dioica L., Ilex guayusa y Uncaria tomentosa en Staphylococcus aureus. Universidad Técnica de Ambato. 2019.
Oliveira WF, Silva PMS, Silva RCS, Silva GMM, Machado G, Coelho LCBB, et al. Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis infections on implants. J Hosp Infect. 2018;98(2):111–7. DOI: 10.1016/j.jhin.2017.11.00
Suresh MK, Biswas R, Biswas L. An update on recent developments in the prevention and treatment of Staphylococcus aureus biofilms. Int J Med Microbiol. 2019;309(1):1–12. DOI: 10.1016/j.ijmm.2018.11.002
Ruiz J. Inactivación de cepas de Staphylococcus aureus procedentes de infecciones asociadas a prótesis articulares, mediante la herramienta CRISPR/Cas9. . Universidad Pública de Navarra. Pamplona; 2020.
García A, Martínez C, Juárez RI, Téllez R, Paredes MA, del Rocío Herrera M, et al. Resistencia a la meticilina y producción de biopelícula en aislamientos clínicos de Staphylococcus aureus y Staphylococcus coagulasa negativa en México. Biomedica. 2019;39(3):1–11. DOI: 10.7705/biomedica.4131
de Cueto-López M, del Pozo-León JL, Franco-Álvarez de Luna F, Marin-Arriaza M. Diagnóstico microbiológico de las infecciones asociadas a dispositivos biomédicos. Vol. 34, Enfermedades Infecciosas y Microbiologia Clinica. Elsevier Doyma; 2016. p. 655–60. DOI: 10.1016/j.eimc.2015.02.012
Moormeier DE, Bayles KW. Staphylococcus aureus biofilm: a complex developmental organism. Mol Microbiol. 2017;104(3):365–76. DOI: 10.1111/mmi.13634
Mandell JB, Orr S, Koch J, Nourie B, Ma D, Bonar DD, et al. Large variations in clinical antibiotic activity against Staphylococcus aureus biofilms of periprosthetic joint infection isolates. J Orthop Res. 2019;37(7):1604–9. DOI: 10.1002/jor.24291
Purrello SM, Garau J, Giamarellos E, Mazzei T, Pea F, Soriano A, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections: A review of the currently available treatment options. J Glob Antimicrob Resist. 2016;7:178–86. DOI: 10.1016/j.jgar.2016.07.010
Yu S, Jiang B, Jia C, Wu H, Shen J, Hu X, et al. Investigation of biofilm production and its association with genetic and phenotypic characteristics of OM (osteomyelitis) and non-OM orthopedic Staphylococcus aureus. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2020;19:10. DOI: 10.1186/s12941-020-00352-4
Schwartz K, Ganesan M, Payne DE, Solomon MJ, Boles BR. Extracellular DNA facilitates the formation of functional amyloids in Staphylococcus aureus biofilms. Mol Microbiol. 2016;99(1):123–34. DOI: 10.1111/mmi.13219
Gil M, Merchan K, Quevedo, Guimarys et al. Formación de biopelículas en aislados de Staphylococcus aureus según la susceptibilidad antimicrobiana y la procedencia clínica. Vitae. 2015;(62):1–8.
Chu M, Zhang M, Liu Y, Kang J, Chu Z, Yin K, et al. Role of Berberine in the Treatment of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Infections. Sci Rep. 2016;6(1):24748. DOI: 10.1038/srep24748
Chen Q, Xie S, Lou X, Cheng S, Liu X, Zheng W, et al. Biofilm formation and prevalence of adhesion genes among Staphylococcus aureus isolates from different food sources. Microbiologyopen. 2020;9(1):1–11. DOI: 10.1002/mbo3.946
Lissarrague S, Bernstein J, Stagnaro JP, Schell C, Sparo MD. Bacteriemia por Staphylococcus aureus con sensibilidad disminuida heterogénea a vancomicina: reporte de un caso. ARS MEDICA Rev Ciencias Médicas. 2020;45(4):20–3. DOI: 10.11565/arsmed.v45i4.1665
Suaréz-Del-Aguila UJ, Iglesias-Osores S, Moreno-Mantilla M. Susceptibilidad antibiótica de Staphylococcus aureus de aislados nasales en estudiantes del norte de Perú. Gac Medica Boliv. 2020;43(1):49–55. DOI: 10.47993/gmb.v43i1.19
Segura M, Muñoz L, Navarrete J, Pinilla G, Castro B. Formación de biopelícula en cepas de Staphylococccus aureus. Univ Col Mayor Cundinamarca. 2015;
Delpech G, Ceci M, Lissarrague S, García Allende L, Baldaccini B, Sparo M. In vitro activity of the antimicrobial peptide AP7121 against the human methicillin-resistant biofilm producers Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. Biofouling. 2020;36(3):266–75. DOI: 10.1080/08927014.2020.1756266
Muñoz L, Castillo C, Viuche L, Sierra A, Ricaurte C, Navarrete J, et al. Metabolismo y formación de biopelícula en Staphylococcus aureus . La Exp requisito para la visibilidad, la Divulg y el impacto la Investig (Tomo III) . 2018;
DOI: https://doi.org/10.23857/pc.v6i9.3143
Enlaces de Referencia
- Por el momento, no existen enlaces de referencia
Polo del Conocimiento
Revista Científico-Académica Multidisciplinaria
ISSN: 2550-682X
Casa Editora del Polo
Manta - Ecuador
Dirección: Ciudadela El Palmar, II Etapa, Manta - Manabí - Ecuador.
Código Postal: 130801
Teléfonos: 056051775/0991871420
Email: polodelconocimientorevista@gmail.com / director@polodelconocimiento.com
URL: https://www.polodelconocimiento.com/
